RNAi exogène HIGS et SIGS : silencing génique ciblé pour le biocontrôle de précision

Le déclencheur du mécanisme est l'ARN double brin (dsRNAMolécule d'ARN constituée de deux brins complémentaires formant une double hélice, agissant comme l'initiateur principal de l'interférence ARN chez les eucaryotes (Monsion et al., 2018; Tenllado & Dı́az-Ruı́z, 2001). Dans les plantes, le dsRNA peut provenir de la réplication virale ou de transcriptions spécifiques, déclenchant la dégradation ciblée des ARN messagers homologues (Koeppe et al., 2023; Mérai et al., 2006; Pomel, 2005) → Vocabulaire) de grande taille, reconnu et clivé par l'enzyme Dicer, une RNase III spécialisée (Le et al., 2024). Les recherches de 2023 et 2024 ont apporté des précisions cruciales sur cette étape :

• Complexes Dicer : Chez les invertébrés, le complexe fonctionnel essentiel est désormais identifié comme étant la structure Dicer-2/siRNA/R2D2/Ago2 (Wei et al., 2023). Contrairement au Dicer humain, le Dicer-2 des insectes nécessite souvent de l'ATP pour traiter efficacement les longs dsRNA (Wei et al., 2023).
• Production de siRNA : Dicer découpe le dsRNA en petits ARN interférents (siRNA) d'une longueur précise de 21 à 25 nucléotides (RNA Interference Pathways, 2025).
• Sélectivité du clivage : Des études récentes ont révélé l'existence d'une « règle d'appariement bipartite » et de motifs spécifiques (comme le motif YCR) qui dictent les sites de clivage de Dicer, augmentant ainsi notre compréhension de la biogenèse des petits ARN (Le et al., 2024).

La précision de l'ARNi repose sur la complémentarité de Watson-Crick entre le siRNA produit et l'ARN messager cible (Ortolá & Daròs, 2024).

• Formation du complexe RISC : Une fois généré, le siRNA est chargé dans le complexe RISC (RNA-Induced Silencing Complex), où la protéine Argonaute sélectionne le brin guide pour cibler l'ARNm complémentaire (Varley & Desaulniers, 2021).
• Clivage sélectif : Cette complémentarité quasi-parfaite assure que seul l'ARNm cible est dégradé, minimisant drastiquement les risques d'effets hors-cibles sur des organismes non cibles (Fenibo & Matambo, 2025).

Pour que le silenciage soit efficace à l'échelle de l'organisme, le signal doit être amplifié et transporté.

• Rôle des RdRP : Les ARN polymérases dépendantes de l'ARN jouent un rôle fondamental en utilisant les siRNAs primaires comme amorces pour synthétiser de nouveaux dsRNAMolécule d'ARN constituée de deux brins complémentaires formant une double hélice, agissant comme l'initiateur principal de l'interférence ARN chez les eucaryotes (Monsion et al., 2018; Tenllado & Dı́az-Ruı́z, 2001). Dans les plantes, le dsRNA peut provenir de la réplication virale ou de transcriptions spécifiques, déclenchant la dégradation ciblée des ARN messagers homologues (Koeppe et al., 2023; Mérai et al., 2006; Pomel, 2005) → Vocabulaire, générant ainsi des siRNAs secondaires (Rossi et al., 2023).
• Propagation : Ce mécanisme d'amplification est particulièrement bien documenté chez les plantes, les champignons et les nématodes, permettant au signal de silenciage de se propager de manière systémique dans tout l'organisme (Rossi et al., 2023). Chez les insectes, bien que le mécanisme de base soit connu, l'efficacité de cette amplification systémique varie encore selon les espèces (Rossi et al., 2023).

Le HIGS repose sur le concept de l'ARNi inter-règne (cross-kingdom RNAi) (Jing et al., 2023). La plante hôte est génétiquement modifiée pour exprimer des cassettes d'ARNi (dsRNA ou micro-ARNPetits ARN non codants (environ 22 nucléotides) qui régulent l'expression génique chez les plantes et les microorganismes du sol, impliqués dans les réponses aux stress abiotiques (sécheresse, salinité) et dans les interactions symbiotiques ou pathogènes. → Vocabulaire artificiels) ciblant des gènes vitaux du bioagresseur (Jing et al., 2023 ; Zhang et al., 2024).

• Stabilité transrégénérationnelle : Les recherches récentes confirment que le HIGS est devenu une méthode efficace et transrégénérationnellement stable, permettant une régulation durable des gènes de l'hôte et du pathogène (Basso et al., 2025).
• Précision accrue : L'intégration de la biologie computationnelle et de la multi-omique devrait permettre en 2026 d'améliorer la spécificité des séquences de dsRNA (Liu & Guy, 2026).

Le contrôle de FusariumGenre de champignons hyphomycètes ubiquistes comprenant de nombreuses espèces pathogènes telluriques (ex: F. oxysporum) responsables de flétrissements vasculaires et de pourritures racinaires chez une large gamme de cultures (Arie, 2019; Saremi, 2011). Ils survivent durablement dans le sol sous forme de chlamydospores et colonisent le xylème des plantes, entraînant leur mort et causant des pertes économiques majeures mondialement (Blanco & Aveling, 2018; Dutta et al., 2023; Wen et al., 2022) → Vocabulaire graminearum a franchi une étape décisive avec le passage du ciblage d'un gène unique à des approches multigéniques :

• Cassettes chimériques : Des lignées de blé transgénique ont été développées pour exprimer des cassettes d'ARNi chimériques ciblant simultanément cinq gènes de virulence et de synthèse du déoxynivalénol : Gpmk1, FgChy1, FgSR, TRI5 et FgTeaA (Shuai et al., 2024). Ces lignées présentent une forte résistance non seulement à la fusariose de l'épi, mais aussi au piétin-échaudage, avec une réduction significative de l'accumulation de DON sans impacter le rendement (Shuai et al., 2024).
• Identification via CRISPR : L'utilisation de CRISPR-Cas9 a permis d'identifier de nouvelles cibles essentielles chez F. graminearum, telles que les gènes Fg10360, Fg13150 et Fg06123, dont le silenciage réduit drastiquement les lésions nécrotiques sur l'orge (Kim et al., 2023).

L'application du HIGS contre les insectes, notamment les coléoptères, est désormais une réalité commerciale établie.

• SmartStax-PRO : Approuvé par l'EPA, ce maïs transgénique est le premier produit à base d'ARNi à cibler la chrysomèle des racines du maïs (Diabrotica virgifera virgifera) (Yang et al., 2022). Il exploite le mécanisme de l'ARNi pour provoquer la mortalité des larves après ingestion en interférant avec des gènes essentiels au développement (Yang et al., 2022).
• Extension aux ravageurs européens : En 2023, le séquençage et l'annotation des transcriptomes de larves de ravageurs majeurs du colza en Europe (comme Brassicogethes aeneus) ont ouvert la voie au développement de solutions HIGS spécifiques pour l'agriculture européenne (Sana et al., 2023).
• Avantage écologique : Contrairement aux insecticides chimiques, le HIGS permet de protéger les insectes pollinisateursVecteurs biotiques (insectes, oiseaux, chauves-souris) essentiels à la reproduction des angiospermes par le transport du pollen des anthères vers les stigmates (Benton et al., 2021). Ces organismes fournissent un service écosystémique majeur pour la production de graines et de fruits, ainsi que pour la biodiversité des milieux semi-naturels et cultivés (Conte et al., 2022; Langlois, 2018) → Vocabulaire et bénéfiques, s'inscrivant ainsi dans les principes "One Health" de protection de la biodiversité (Fenibo & Matambo, 2025 ; Liu & Guy, 2026).

Malgré son efficacité, le déploiement du HIGS rencontre deux obstacles majeurs :

• Limites techniques : L'application à grande échelle reste freinée par les difficultés de transformation génétique chez certaines espèces de cultures économiquement importantes (Zhao et al., 2024).
• Acceptation et réglementation : L'hésitation du public face aux organismes génétiquement modifiés et le cadre réglementaire complexe, notamment en Europe, ralentissent la transition du laboratoire au champ (Basso et al., 2025 ; Fenibo & Matambo, 2025).

Contrairement au HIGS, le SIGS ne nécessite aucune modification génétique de la plante hôte. Il repose sur l'application topique de molécules de dsRNAMolécule d'ARN constituée de deux brins complémentaires formant une double hélice, agissant comme l'initiateur principal de l'interférence ARN chez les eucaryotes (Monsion et al., 2018; Tenllado & Dı́az-Ruı́z, 2001). Dans les plantes, le dsRNA peut provenir de la réplication virale ou de transcriptions spécifiques, déclenchant la dégradation ciblée des ARN messagers homologues (Koeppe et al., 2023; Mérai et al., 2006; Pomel, 2005) → Vocabulaire exogènes qui sont ensuite internalisées par deux voies principales :

• Absorption directe par le pathogène : le pathogène capte le dsRNA directement depuis la surface des tissus végétaux (Singewar & Fladung, 2023 ; Wang et al., 2023).
• Translocation systémique via la plante : le dsRNA pénètre les cellules végétales et circule via le système vasculaire (xylème et phloème), permettant une protection étendue au-delà des zones directement pulvérisées (Cheng et al., 2024).
  Une avancée majeure de 2024 concerne les ravageurs piqueurs-suceurs (pucerons, acariens), autrefois résistants au SIGS. L'utilisation de vecteurs spécifiques a démontré que le dsRNA peut désormais traverser la barrière intestinale et atteindre les organes cibles, augmentant considérablement la mortalité de ces insectes (Cheng et al., 2024).

L'obstacle historique de la dégradation rapide du dsRNAMolécule d'ARN constituée de deux brins complémentaires formant une double hélice, agissant comme l'initiateur principal de l'interférence ARN chez les eucaryotes (Monsion et al., 2018; Tenllado & Dı́az-Ruı́z, 2001). Dans les plantes, le dsRNA peut provenir de la réplication virale ou de transcriptions spécifiques, déclenchant la dégradation ciblée des ARN messagers homologues (Koeppe et al., 2023; Mérai et al., 2006; Pomel, 2005) → Vocabulaire par les UV et les RNases environnementales est désormais surmonté grâce à la nanotechnologie de livraison (Zhao et al., 2024).

• Nanovecteurs LDH : Ces "feuillets d'argile" biodégradables encapsulent le dsRNA, le protégeant du lessivage par la pluie. Le dsRNA reste détectable sur les feuilles jusqu'à 30 jours après application lorsqu'il est encapsulé dans des nanovecteurs LDH, prolongeant ainsi la fenêtre de protection (Zhao et al., 2024).
• Efficacité contre Fusarium graminearum : L'application de dsRNA a montré une réduction des symptômes de la fusariose supérieure à 90 % en conditions réelles (Feng et al., 2025). Le silenciage de gènes essentiels comme Fg10360 ou Fg13150 (identifiés via CRISPR) bloque la croissance fongique avant même l'infection des tissus internes (Kim et al., 2023).
• Nouvelles frontières : Le SIGS s'étend désormais au contrôle des pathogènes en milieu forestier et à la mise au point d'herbicides sélectifs, offrant une précision chirurgicale pour éliminer des mauvaises herbes résistantes sans affecter la culture principale (Panozzo et al., 2025 ; Singewar & Fladung, 2023).

Bien que le SIGS évite les complexités réglementaires liées aux OGM, son déploiement reste soumis à des évaluations strictes des risques. Selon les directives de l'OCDE réaffirmées en 2024, l'accent est mis sur l'utilisation d'outils in silico pour garantir l'absence d'effets hors-cibles sur la faune auxiliaire et la santé humaine (Basso et al., 2025 ; Távora et al., 2022). Le coût de production à grande échelle du dsRNAMolécule d'ARN constituée de deux brins complémentaires formant une double hélice, agissant comme l'initiateur principal de l'interférence ARN chez les eucaryotes (Monsion et al., 2018; Tenllado & Dı́az-Ruı́z, 2001). Dans les plantes, le dsRNA peut provenir de la réplication virale ou de transcriptions spécifiques, déclenchant la dégradation ciblée des ARN messagers homologues (Koeppe et al., 2023; Mérai et al., 2006; Pomel, 2005) → Vocabulaire, bien qu'en baisse, reste un facteur clé pour une adoption massive en agriculture régénératrice (Palli, 2023 ; Chen et al., 2025).

La transition vers une agriculture régénératrice exige des solutions qui respectent l'intégrité biologique des sols. En 2026, l'intégration de la nanotechnologieApplication de matériaux à l'échelle nanométrique pour développer des outils de précision en agriculture, tels que des nanocapteurs pour le suivi des nutriments ou des systèmes de délivrance ciblée (nanofertilisants, nanopesticides) (Prasad et al., 2017; Ram et al., 2014). Ces technologies visent à augmenter l'efficience d'utilisation des ressources tout en réduisant l'impact environnemental sur la santé du sol (Fraceto et al., 2016; Zhang et al., 2021) → Vocabulaire et de la biologie computationnelle est projetée comme essentielle pour l'efficacité des dsRNA (Liu & Guy, 2026). Les vecteurs de type hydroxydes doubles lamellaires et les feuillets d'argile assurent une protection du dsRNA contre les UV et le lessivage, maintenant son activité sur le feuillage pendant 20 à 30 jours (Marzano et al., 2023 ; Zhao et al., 2024). Cependant, l'innocuité de ces vecteurs pour le microbiome du sol est un point de vigilance : certaines études soulignent que les nanomatériaux à base de carbone peuvent altérer la diversité microbienne et l'efficacité de l'élimination de l'azote dans le sol (Zhao et al., 2024).
Pour pallier ces risques, l'intégration de la multi-omique (génomique, transcriptomique, protéomique et épigénétique) permet de découvrir des cibles avec une précision chirurgicale (Yadav et al., 2025). Cette approche garantit que les séquences de dsRNA sont strictement spécifiques au bioagresseur cible, évitant ainsi les effets délétères sur les organismes auxiliaires (vers de terre, pollinisateurs) (Kim, 2025). L'intégration de la multi-omique et des pesticides à base d'ARN interférent s'aligne sur les principes de l'approche "One Health" (Liu & Guy, 2026).

Le contrôle des champignons toxigènes, particulièrement le complexe FusariumGenre de champignons hyphomycètes ubiquistes comprenant de nombreuses espèces pathogènes telluriques (ex: F. oxysporum) responsables de flétrissements vasculaires et de pourritures racinaires chez une large gamme de cultures (Arie, 2019; Saremi, 2011). Ils survivent durablement dans le sol sous forme de chlamydospores et colonisent le xylème des plantes, entraînant leur mort et causant des pertes économiques majeures mondialement (Blanco & Aveling, 2018; Dutta et al., 2023; Wen et al., 2022) → Vocabulaire, a évolué vers des approches multigéniques pour garantir la sécurité sanitaire des grains (Shuai et al., 2024 ; Stakheev et al., 2024). Les cibles privilégiées incluent :

• Biosynthèse des toxines : Le gène TRI5 (synthèse du déoxynivalénol) est une cible majeure pour le contrôle des mycotoxines. Le silenciage de TRI5 réduit non seulement la virulence du champignon, mais diminue considérablement l'accumulation de mycotoxines dans les récoltes (Shuai et al., 2024).
• Gènes essentiels identifiés par CRISPR : L'utilisation de CRISPR-Cas9 a permis d'isoler des gènes vitaux comme Fg10360, Fg13150 et Fg06123 chez F. graminearum. Leur ciblage via le SIGS bloque la croissance fongique avant l'apparition des lésions nécrotiques (Kim et al., 2023).
• Virulence et résistance : Des cassettes chimériques ciblant simultanément des régulateurs de virulence (Gpmk1, FgChy1) et des gènes de structure (FgTeaA) ont conféré une forte résistance à la fusariose de l'épi (Shuai et al., 2024). De plus, le silenciage des transporteurs d'efflux (protéines ABC et MFS) permet désormais de restaurer l'efficacité des fongicides classiques chez des pathogènes comme Botrytis cinerea (Molina-Santiago & Vela-Corcía, 2025).

Pour les ravageurs, la stratégie s'est déplacée du simple ciblage de gènes de détoxification vers l'interruption des processus cellulaires fondamentaux, jugés plus efficaces (Cedden & Bucher, 2024 ; Toprak, 2025).

• Processus cellulaires de base : Des criblages génomiques à grande échelle (notamment chez Tribolium castaneum) ont révélé que le ciblage de la dégradation des protéines (protéasomeGigantesque complexe multiprotéique ubiquitaire chez les eucaryotes, responsable de la dégradation sélective des protéines cellulaires mal repliées, endommagées ou oxydées via la voie ubiquitine-protéasome (Improving Fertilizer Use Efficiency–Methods and Strategies for the Future, 2023). Ce compartiment catalytique assure le maintien de l'homéostasie protéique et la régulation du cycle cellulaire en recyclant les acides aminés, jouant un rôle central dans la réponse aux stress environnementaux (Improving Fertilizer Use Efficiency–Methods and Strategies for the Future, 2023) → Vocabulaire 26S) et de la traduction est plus létal que le ciblage des récepteurs nerveux classiques (Cedden & Bucher, 2024). Par exemple, le silenciage d'une sous-unité régulatrice du protéasome 26S induit une mortalité rapide et une stérilité chez les cicadelles vectrices de phytoplasmes (Canuto et al., 2025).
• Métabolisme de la chitine : Les gènes de la chitine synthase et de la chitinase sont des cibles de choix pour les ravageurs piqueurs-suceurs. L'application de dsRNA-LDH ciblant le gène Chit a démontré une efficacité systémique accrue, augmentant la mortalité des nymphes chez Panonychus citri et Aphis gossypii (Cheng et al., 2024).
• Immunité et Développement : Le gène immunitaire Sl 102 chez Spodoptera littoralis et les gènes impliqués dans la mue ou le système nerveux (acétylcholinestérase) permettent de réduire drastiquement la fitness des populations de ravageurs tout en limitant l'usage d'insecticides chimiques (Amiri, 2025).

Bien que l'ARNi soit salué pour sa spécificité, le risque d'effets non-cibles reste une préoccupation majeure pour la biodiversité (Chen & Schutter, 2024 ; Luo et al., 2024).

• Homologie de séquence : Le risque principal réside dans le silençage accidentel de gènes chez des organismes non-cibles, tels que les pollinisateursVecteurs biotiques (insectes, oiseaux, chauves-souris) essentiels à la reproduction des angiospermes par le transport du pollen des anthères vers les stigmates (Benton et al., 2021). Ces organismes fournissent un service écosystémique majeur pour la production de graines et de fruits, ainsi que pour la biodiversité des milieux semi-naturels et cultivés (Conte et al., 2022; Langlois, 2018) → Vocabulaire ou la faune du sol, présentant des similarités génétiques avec le ravageur (Díaz et al., 2025). Les experts recommandent désormais de proscrire toute séquence présentant des segments de 21 nucléotides d'identité parfaite ou plus de 80 % d'homologie globale avec le transcriptome d'espèces protégées (Neef et al., 2025).
• Instabilité épigénétique : Au-delà du silençage post-transcriptionnel, des preuves récentes suggèrent que de petits ARN peuvent induire un silençage génique transcriptionnel via des modifications épigénétiques (Díaz et al., 2025). Ces effets sont moins prévisibles et pourraient potentiellement être hérités, soulevant des questions quant à la sécurité à long terme des cultures HIGS (Díaz et al., 2025).

L'idée que les bioagresseurs ne pourraient pas développer de résistance à l'ARNi est désormais contredite par les faits (Liao et al., 2024).

• Évolution rapide en conditions réelles : Des études de 2024 sur la chrysomèle du saule (Plagiodera versicolora) ont démontré qu'une pression de sélection continue peut conduire à l'émergence de souches hautement résistantes au dsRNAMolécule d'ARN constituée de deux brins complémentaires formant une double hélice, agissant comme l'initiateur principal de l'interférence ARN chez les eucaryotes (Monsion et al., 2018; Tenllado & Dı́az-Ruı́z, 2001). Dans les plantes, le dsRNA peut provenir de la réplication virale ou de transcriptions spécifiques, déclenchant la dégradation ciblée des ARN messagers homologues (Koeppe et al., 2023; Mérai et al., 2006; Pomel, 2005) → Vocabulaire en seulement sept générations (Liao et al., 2024).
• Mécanismes adaptatifs : La résistance peut se manifester par une activité accrue des nucléases (dsRNases) dans l'intestin du ravageur, dégradant le dsRNA avant son absorption, ou par des polymorphismes de séquence au niveau du gène cible, rendant le dsRNA appliqué inopérant (He et al., 2022 ; Mehlhorn et al., 2021). Ces découvertes soulignent la nécessité d'une gestion intégrée de la résistance, similaire à celle des pesticides conventionnels.

Le paysage réglementaire mondial reste fragmenté, créant une incertitude pour les acteurs de l'agroécologie (Galli et al., 2024).

• SIGS vs HIGS : Aux États-Unis, le produit Ledprona a été approuvé par l'EPA comme biopesticideUn biopesticide est un agent de protection des cultures dérivé de ressources naturelles telles que des microorganismes (bactéries, champignons, virus), des extraits végétaux ou des substances biochimiques comme les phéromones (Al-Alam, 2017; Poidatz, 2017). Ils sont utilisés comme alternative durable aux pesticides de synthèse pour lutter contre les ravageurs et les maladies, car ils sont généralement plus sélectifs et moins rémanents dans l'écosystème (Deguine & Ledouble, 2022; Ledouble, 2020) → Vocabulaire biochimique (Chen et al., 2025 ; Galli et al., 2024 ; Li et al., 2026 ; Rodrigues et al., 2021). En Europe, la situation est plus complexe : le SIGS est actuellement traité selon les critères stricts des produits phytopharmaceutiques chimiques, en l'absence de cadre dédié (Dietz-Pfeilstetter et al., 2021 ; Gathman et al., 2025 ; Li et al., 2022).
• Le débat NGT : Des voix s'élèvent pour alerter sur le fait que le projet de règlement actuel ne prévoit aucun mécanisme de retrait d'autorisation pour les plantes NGT1-ARNi, même si des risques environnementaux ou sanitaires étaient démontrés après leur mise en culture (Bohle et al., 2024). Cette absence de "principe de précaution dynamique" alimente le débat juridique sur l'adéquation entre l'innovation génétique et la protection de l'environnement au titre de la directive 2001/18/CE (Epifanio et al., 2023 ; Kershen, 2025).

L'agriculture régénératrice ne se définit plus comme une simple somme de pratiques, mais comme un cadre systémique axé sur les résultats : restauration de la santé des sols, séquestration du carbone et régénération de la biodiversité (Coulardeau et al., 2022 ; Hargreaves-Méndez & Hötzel, 2023). L'intégration de l'ARNi dans ce cadre repose sur un changement de paradigme : la technologie ne doit pas seulement servir à l'extinction symptomatique d'un ravageur, mais doit devenir un levier pour restaurer les équilibres écosystémiques (Liu & Guy, 2026).
L'utilisation de biopesticides à base de dsRNAMolécule d'ARN constituée de deux brins complémentaires formant une double hélice, agissant comme l'initiateur principal de l'interférence ARN chez les eucaryotes (Monsion et al., 2018; Tenllado & Dı́az-Ruı́z, 2001). Dans les plantes, le dsRNA peut provenir de la réplication virale ou de transcriptions spécifiques, déclenchant la dégradation ciblée des ARN messagers homologues (Koeppe et al., 2023; Mérai et al., 2006; Pomel, 2005) → Vocabulaire s'aligne sur ces principes grâce à sa haute biodégradabilité dans le sol et l'eau, limitant ainsi la contamination à long terme et protégeant les espèces clés de voûte comme les abeilles (Kim, 2025). Cette sélectivité chirurgicale est la « troisième révolution des pesticides », permettant d'atteindre les objectifs de durabilité (Luo et al., 2024). La doctrine régénérative prône ainsi l'usage de l'ARNi comme outil de précision au sein d'une gestion intégrée (Yadav et al., 2025).

L'héritage épigénétiqueÉtude des changements héréditaires et réversibles dans l'activité des gènes ne résultant pas de modifications de la séquence d'ADN, mais de l'influence de l'environnement sur l'expression génique (Pitchers et al., 2017). Ces mécanismes, tels que la méthylation de l'ADN ou la modification des histones, permettent à un organisme d'archiver les effets des stress environnementaux et d'adapter son phénotype sans altérer son génotype (Cazzonelli, 2011; Li et al., 2018; Pitchers et al., 2017) → Vocabulaire du silençage suggère une nature potentiellement moins transitoire des traitements par ARNi (Zhao et al., 2024).

• L’« Engin Épigénétique » : L'héritage épigénétique transgénérationnel fonctionne comme un mécanisme d'adaptation rapide aux changements environnementaux (Quyoom & Peer, 2026). Il a été démontré que les petits ARN, la méthylation de l'ADN et les modifications d'histones forment un circuit coordonné capable de convertir les signaux environnementaux en mémoires phénotypiques stables (Quyoom & Peer, 2026).
• Amorçage et Résilience : Le silençage induit par dsRNA peut déclencher une mémoire immunitaire ou un « priming », renforçant la réponse défensive de la plante lors d'une exposition ultérieure au pathogène, sans modification de la séquence ADN (Farkas & Dobránszki, 2024). Ces modifications, telles que la méthylation de l'ADN dirigée par l'ARN, peuvent être transmises aux générations futures, créant une « mémoire végétale » adaptative (Wagh et al., 2025).
• Héritage Inter-règne : Si chez certains organismes comme C. elegans, l'héritage du silençage subit une dilution passive après 3 à 5 générations (phénomène de goulot d'étranglement), les avancées du HIGS chez les plantes démontrent désormais une stabilité transrégénérationnelle avérée (Basso et al., 2025). Cette capacité permet d'envisager des stratégies de « sélection épigénétique » pour produire des cultures résistantes au stress sans recours aux OGM classiques (Wagh et al., 2025).
  En conclusion, la mémoire épigénétique transforme l'ARNi d'un simple agent de lutte en un outil de programmation de la résilience héréditaire des agroécosystèmes, et est aligné sur les cycles naturels de la doctrine régénérative (Quyoom & Peer, 2026).